Russian Journal of Biological Physics and Chemisrty Russian Journal of Biological Physics and Chemisrty АКТУАЛЬНЫЕ ВОПРОСЫ БИОЛОГИЧЕСКОЙ ФИЗИКИ И ХИМИИ 2499-9962 54813 10.29039/rusjbpc.2022.0477 Общая биофизика General biophysics Общая биофизика ETRANITROSYL IRON COMPLEX WITH THIOSULFATE LIGANDS PREVENTS MITOCHONDRIAL DYSFUNCTION UNDER STRESS Тетранитрозильный комплекс железа с тиосульфатными лигандами предотвращает дисфункцию митохондрий в условиях стресса Жигачева И. В. Zhigacheva I. V. zhigacheva@mail.ru Крикунова Н. И. Krikunova N. I. Генерозова И. П. Generozova I. P. igenerozova@mail.ru Буцанец П. А. Butsanets P. A. Васильева С. В. Vasilyeva S. V. svvs0709@mail.ru Расулов М. М. Rasulov M. M. rasulovmaksud@gmail.com Институт биохимической физики им. Н.М. Эмануэля РАН Москва Россия N.M. Emanuel Institute of Biochemical Physics, Russian Academy of Sciences Moscow Russian Federation Институт биохимической физики им. Н.М. Эмануэля РАН Москва Россия N.M. Emanuel Institute of Biochemical Physics, Russian Academy of Sciences Moscow Russian Federation Институт физиологии растений им. К.А. Тимирязева РАН Москва Россия K.A. Timiryazev Institute of Plant Physiology Russian Academy of Sciences Moscow Russian Federation Институт физиологии растений им. К.А. Тимирязева РАН Москва Россия K.A. Timiryazev Institute of Plant Physiology Russian Academy of Sciences Moscow Russian Federation Институт биохимической физики им. Н.М. Эмануэля РАН Москва Россия N.M. Emanuel Institute of Biochemical Physics, Russian Academy of Sciences Moscow Russian Federation Государственный научно-исследовательский институт химии и технологии элементоорганических соединений Москва Россия State Scientific Research Institute of Chemistry and Technology of Organoelement Compounds Moscow Russian Federation 25 03 2022 25 03 2022 7 1 17 24 20 03 2022 20 03 2022 https://rusjbpc.ru/en/nauka/article/54813/view

Исследовано влияние стрессовых воздействий (дефицита воды, высокотемпературного стресса) и донора оксида азота натрий μ2-дитиосульфато-тетранитозилдиферрат тетрагидрата Na2 [Fe2 (S2O3)2 (NO)4]2 × 4H2O (ТНКЖ-тио) на жирнокислотный состав и биоэнергетические характеристики митохондрий 5-дневных этиолированных проростков гороха. Стрессовые воздействия вызывали активацию ПОЛ в мембранах митохондрий. При этом значительные изменения происходили в содержании С18 и С20 жирных кислот (ЖК). Снижение содержания линолевой и линоленовой кислот – одних из основных ЖК, входящих у высших растений в состав кардиолипина, по-видимому, вызывало снижение максимальных скоростей окисления НАД-зависимых субстратов. Обработка семян гороха 10-6М ТНКЖ-тио предотвращала активацию ПОЛ, изменение жирнокислотного состава мембран митохондрий и способствовала сохранению биоэнергетических характеристик этих органелл. Предупреждая снижение энергетического метаболизма ТНКЖ-тио, вероятно, обладает адаптогенными свойствами, которые. отразились и на физиологических показателях, а именно на росте проростков. Обработка семян и проростков гороха исследуемым препаратом предотвращала торможение роста корней и побегов в условиях дефицита воды. На основании полученных данных можно прийти к заключению, что протекторные свойства ТНКЖ-тио обусловлены его антиоксидантной активностью.

The effect of stress (water deficiency, high-temperature stress) and nitric oxide donor sodium μ2-dithiosulphate-tetranitosyldiferrate tetrahydrate Na2 [Fe2 (S2O3)2 (NO)4]2 × 4H2O (TNIC-thio) on the fatty acid composition and bioenergetic characteristics of 5-day etiolated pea seedling mitochondria was studied. Stressful effects caused the activation of LPO in the mitochondrial membranes. At the same time, significant changes occurred in the content of C18 and C20 fatty acids (FA). A decrease in the content of linoleic and linolenic acids, one of the main FA components of cardiolipin in higher plants, apparently caused a decrease in the maximum rates of oxidation of NAD-dependent substrates. The. treatment of pea seeds with 10-6M TNIC-thio prevented the activation of LPO, changes in the fatty acid composition of mitochondrial membranes, and contributed to the preservation of the bioenergetic characteristics of these organelles. By preventing the decline in energy metabolism, TNIC-thio probably has adaptogenic properties, that were also reflected in physiological parameters, namely, the growth of seedlings. Treatment of pea seeds and seedlings with the studied preparation prevented inhibition of root and shoot growth in conditions of water deficiency. Based on the data obtained, it can be concluded that the protective properties of TNIC-thio are due to its antioxidant activity.

 доноры оксида азота дефицит воды тепловой стресс митохондрии жирные кислоты nitric oxide donors water deficiency heat stress mitochondria fatty acids Работа выполнена в рамках государственного задания Министерства науки и высшего образования Российской Федерации (тема № 44.4-44.5 1201253310).

Иванова Т.В., Воронков А.С., Кузнецова Э.И., Кумахова Т.Х., Жиров В.К., Цыдендамбаев В.Д. Жирные кислоты липидов перикарпия Cydonia oblonga Mill. и Mespilus germanica L. вовлекаются в адаптацию растений к условиям высотной поясности. ДАН, 2019, т. 486, № 5, с. 620-625. Ivanova T.V., Voronkov A.S., Kuznetsova E.I., Kumakhova T.Kh., Zhirov V.K., Tsydendambaev V.D. Fatty acids of lipids of the pericarp of Cydonia oblonga Mill. and Mespilus germanica L. are involved in plant adaptation to altitudinal zonality. Reports of the Russian Academy of Sciences, 2019, vol. 486, no. 5, pp. 620-625, doi: 10.31857/S0869-56524865620-625. (In Russ.) Живетьев. М.А., Граскова И.А., Дударева Л.В., Столбикова А.В., Войников В.К. Изменение жирнокислотного состава растений при гипотермической адаптации. Journal of Stress Physiology & Biochemistry. 2010, т. 6, № 4, с. 51-65. Zhivetiev M.A., Graskova I.A., Dudareva L.V., Stolbikova A.V., Voinikov V.K. Changes in the fatty acid composition of plants during hypothermic adaptation. Journal of Stress Physiology & Biochemistry, 2010, vol. 6, no 4, pp. 51-65. (In Russ.) Hou Q., Ufer G., Bartels D. Lipid signalling in plant responses to abiotic stress. Plant Cell Environ., 2016, vol. 39, no. 5, pp. 1029-48, doi: 10.1111/pce.12666. Hou Q., Ufer G., Bartels D. Lipid signalling in plant responses to abiotic stress. Plant Cell Environ., 2016, vol. 39, no. 5, pp. 1029-48, doi: 10.1111/pce.12666. Okazaki Y, Saito K. Roles of lipids as signaling molecules and mitigators during stress response in plants. Plant J., 2014, vol. 79, no. 4, pp. 584-96, doi: 10.1111/tpj.12556. Okazaki Y, Saito K. Roles of lipids as signaling molecules and mitigators during stress response in plants. Plant J., 2014, vol. 79, no. 4, pp. 584-96, doi: 10.1111/tpj.12556. Грабельных О.И., Кириченко К.А., Побежимова Т.П., Боровик О.А., Павловская Н.С., Любушкина И.В., Королева Н.А., Войников В.К Устойчивость проростков озимой пшеницы к кратковременному действию отрицательной температуры может быть обусловлена активацией разобщающих белков и АТФ/АДФ антипортера. Биол. мембраны, 2014, т. 31, № 3. Grabelnykh O.I., Kirichenko K.A., Pobezhimova T.P., Borovik O.A., Pavlovskaya N.S., Lyubushkina I.V., Koroleva N.A., Voynikov V.K. wheat to a short-term exposure to negative temperatures may be due to the activation of uncoupling proteins and the ATP/ADP antiporter. Biol. Membranes, 2014, vol. 31, no. 3. (In Russ.) Pastore D. The Enigmatic Metabolite Transport in Plant Mitochondria Lacking Proton Motive Force - news from Durum Wheat Mitochondria. Bioenergetics, 2014, vol. 3, no 3, pp. 121-122, doi: 10.4172/2167-7662.1000e121. Pastore D. The Enigmatic Metabolite Transport in Plant Mitochondria Lacking Proton Motive Force - news from Durum Wheat Mitochondria. Bioenergetics, 2014, vol. 3, no 3, pp. 121-122, doi: 10.4172/2167-7662.1000e121. Ayala A., Muñoz M. F., Argüelles S. Lipid Peroxidation: Production, Metabolism, and Signaling Mechanisms of Malondialdehyde and 4-Hydroxy-2-Nonenal. Oxid Med. Longev., 2014, vol. 2014, pp. 2-67, doi: 10.1155/2014/360438. Ayala A., Muñoz M. F., Argüelles S. Lipid Peroxidation: Production, Metabolism, and Signaling Mechanisms of Malondialdehyde and 4-Hydroxy-2-Nonenal. Oxid Med. Longev., 2014, vol. 2014, pp. 2-67, doi: 10.1155/2014/360438. Taylor N.L., Heazlewood J.L, Day D.A., Millar A.H. Differential Impact of Environmental Stresses on the Pea Mitochondrial Proteome. Mol Cell Proteomics, 2005, vol. 4, no. 8, pp. 1122-1133, doi: 10.1074/mcp.M400210-MCP200. Taylor N.L., Heazlewood J.L, Day D.A., Millar A.H. Differential Impact of Environmental Stresses on the Pea Mitochondrial Proteome. Mol Cell Proteomics, 2005, vol. 4, no. 8, pp. 1122-1133, doi: 10.1074/mcp.M400210-MCP200. Zhigacheva I.V., Burlakova E. B. Plant Growth and Development Regulators and Their Effect on the Functional State of Mitochondria. Chemistry and Technology of Plant Substances. Chemical and Biochemical Aspects/ Ed. Ed Kutchin A.V., Shishkina L.N., Weisfeld L.I. Oakville: Apple Academic Press, 2017, chapter 12, pp. 243-278, doi: 10.1201/9781315207469-15. Zhigacheva I.V., Burlakova E. B. Plant Growth and Development Regulators and Their Effect on the Functional State of Mitochondria. Chemistry and Technology of Plant Substances. Chemical and Biochemical Aspects/ Ed. Ed Kutchin A.V., Shishkina L.N., Weisfeld L.I. Oakville: Apple Academic Press, 2017, chapter 12, pp. 243-278, doi: 10.1201/9781315207469-15. Мамаева А.А., Фоменков А.В., Носов И.Е., Мошков Л.А., Мур Ж., Холл М.А., Новикова Г.В. Регуляторная роль оксида азота в растениях. Физиол. Растений. 2015, т. 62, № 4, с. 459-474. Mamaeva A.A., Fomenkov A.V., Nosov I.E., Moshkov L.A., Moore Zh., Hall M.A., Novikova G.W. Regulatory role of nitric oxide in plants. Physiol. Plants, 2015, vol. 62, no. 4, pp. 459-474, doi: 10.7868/S0015330315040132. (In Russ.) Shi H., Ye T., Zhu J.K., Chan Z. Constitutive production of nitric oxide leads to enhanced drought stress resistance and extensive transcriptional reprogramming in Arabidopsis. J. Exp. Bot., 2014, vol. 65, pp. 4119-4131, doi: 10.1093/jxb/eru184. Shi H., Ye T., Zhu J.K., Chan Z. Constitutive production of nitric oxide leads to enhanced drought stress resistance and extensive transcriptional reprogramming in Arabidopsis. J. Exp. Bot., 2014, vol. 65, pp. 4119-4131, doi: 10.1093/jxb/eru184. Nabi R.B.S., Tayade R., Hussain A., Kulkarni K.P., Imran Q.M., Bong-Gyu Mun. Nitric oxide regulates plant responses to drought, salinity, and heavy metal stress. Environmental and Experimental Botany, 2019, vol. 161, pp. 120-133, doi: 10.1016/j.envexpbot.2019.02.003. Nabi R.B.S., Tayade R., Hussain A., Kulkarni K.P., Imran Q.M., Bong-Gyu Mun. Nitric oxide regulates plant responses to drought, salinity, and heavy metal stress. Environmental and Experimental Botany, 2019, vol. 161, pp. 120-133, doi: 10.1016/j.envexpbot.2019.02.003. Ванин А.Ф. Динитрозильные комплексы железа с тиол-содержащими лигандами: физико-химия, биология, медицина. Москва-Ижевск: Институт компьютерных исследований, 2015, 220 с. Vanin A.F. Dinitrosyl complexes of iron with thiol-containing ligands: physical chemistry, biology, medicine. Moscow-Izhevsk: Institute for Computer Research, 2015, 220 p. (In Russ.). Hasanuzzaman M.K., Nahar K., Alam Md.M., M. Fujita M. Exogenous nitric oxide alleviates high temperature induced oxidative stress in wheat (Triticum aestivum L.) seedlings by modulating the antioxidant defense and glyoxalase. Australian J. Crop Science, 2012, vol. 6, no. 8, pp. 1314-1323. Hasanuzzaman M.K., Nahar K., Alam Md.M., M. Fujita M. Exogenous nitric oxide alleviates high temperature induced oxidative stress in wheat (Triticum aestivum L.) seedlings by modulating the antioxidant defense and glyoxalase. Australian J. Crop Science, 2012, vol. 6, no. 8, pp. 1314-1323. Seabra A.B., Oliveira H.C. How nitric oxide donors can protect plants in a changing environment: what we know so far and perspectives. AIMS Molecular Science, 2016, vol. 3, no. 4, pp. 692-718, doi: 10.3934/molsci.2016.4.692. Seabra A.B., Oliveira H.C. How nitric oxide donors can protect plants in a changing environment: what we know so far and perspectives. AIMS Molecular Science, 2016, vol. 3, no. 4, pp. 692-718, doi: 10.3934/molsci.2016.4.692. Санина Н.А., Алдошин С.М. Строение и свойства нитрозильных комплексов железа с функциональными серосодержащими лигандами. Изв. РАН, Сер., Хим, 2011, т. 7, с. 1199-1205. Sanina N.A., Aldoshin S.M. Structure and properties of iron nitrosyl complexes with functional sulfur-containing ligands. Russian Chemical Bulletin, 2011, vol. 7, pp. 1199-1205, doi: 10.1007/s11172-011-0192-x. (In Russ.) Zhou B., Guo Z., Xing J., Huang B. Nitric oxide is involved in abscisic acid-induced antioxidant activities in Stylosanthes guianensis. J. Exp. Bot., 2005, vol. 56, pp. 3223-3228, doi: 10.1093/jxb/eri319. Zhou B., Guo Z., Xing J., Huang B. Nitric oxide is involved in abscisic acid-induced antioxidant activities in Stylosanthes guianensis. J. Exp. Bot., 2005, vol. 56, pp. 3223-3228, doi: 10.1093/jxb/eri319. Попов В.Н., Руге Э.К., Старков А.А. Влияние ингибиторов электронного транспорта на образование активных форм кислорода при окислении сукцината митохондриями гороха. Биохимия, 2003, т. 68, № 7, с. 910-916. Popov V.N., Ruge E.K., Starkov A.A. Influence of inhibitors of electron transport on the formation of reactive oxygen species during the oxidation of succinate by pea mitochondria. Biochemistry, 2003, vol. 68, no. 7, pp. 910-916. (In Russ.) Fletcher B.I., Dillard C.D., Tappel A.L. Measurement of fluorescent lipid peroxidation products in biological systems and tissues. Anal. Biochem., 1973, vol. 52, pp. 1-9. Fletcher B.I., Dillard C.D., Tappel A.L. Measurement of fluorescent lipid peroxidation products in biological systems and tissues. Anal. Biochem., 1973, vol. 52, pp. 1-9. Wang J., Sunwoo H., Cherian G., Sim I.S. Fatty acid determination in chicken egg yolk. A comparison of different methods. Poultary science, 2000, vol. 79, pp. 1168-1171, doi: 10.1093/ps/79.8.1168. Wang J., Sunwoo H., Cherian G., Sim I.S. Fatty acid determination in chicken egg yolk. A comparison of different methods. Poultary science, 2000, vol. 79, pp. 1168-1171, doi: 10.1093/ps/79.8.1168. Carreau J.P., Dubacq J.P. Adaptation of macroscale method to the microscale for fatty acid methyl transesterification of biological lipid extracts. J. Chromatogr., 1979, vol. 151, pp. 384-390. Carreau J.P., Dubacq J.P. Adaptation of macroscale method to the microscale for fatty acid methyl transesterification of biological lipid extracts. J. Chromatogr., 1979, vol. 151, pp. 384-390. Golovina R.V., Kuzmenko T.E. Thermodynamic Evaluation Interaction of Fatty Acid Methyl Esters with Polar and Nonpolar Stationary Phases, Based on Their Retention Indices. Сhromatogr., 1977, vol. 10, no. 9, pp. 545-546, doi: 10.1007/BF02262915. Golovina R.V., Kuzmenko T.E. Thermodynamic Evaluation Interaction of Fatty Acid Methyl Esters with Polar and Nonpolar Stationary Phases, Based on Their Retention Indices. Chromatogr., 1977, vol. 10, no. 9, pp. 545-546, doi: 10.1007/BF02262915. Жигачева И.В., Васильева С.В., Генерозова И.П., М.М. Расулов М.М. Тетранитрозильный биядерный комплекс железа повышает устойчивость проростков гороха и клеток E. coli к стрессовым воздействиям. Биологические мембраны, 2020, т. 37, № 2, с. 149-153. Zhigacheva I.V., Vasilyeva, S.V., Generozova I.P., Rasulov M.M. Tetranitrosyl binuclear iron complex increases the resistance of pea seedlings and E. coli cells to stress. Biochemistry (Moscow), supplementseries A: Membrane and cell biology, 2020, vol. 37, no. 2, pp. 149-153 (In Russ.). Макаренко С.П., Константинов Ю.М., Хотимченко С.В., Коненкина Т.А., Арзиев А.Ш. Жирнокислотный состав липидов митохондриальных мембран у представителей культурных (Zea Mays) и дикорастущих (Elymus Sibirieus) злаков. Физиол. растений, 2013, т. 60, № 2, с. 205-213. Makarenko S.P., Konstantinov Y.M., Khotimchenko S.V., Konenkina T.A., Arziev A.Sh. Fatty acid composition of mitochondrial membrane lipids in cultivated (Zea mays) and wild (Elymus sibiricus). Grasses. Russ J Plant Physiol 2003, vol. 50, pp. 548-553, doi: 10.1023/A:1024716606132. (In Russ.) Gigon A., Matos A.R., Laffray D., Zuily-Fodil Y., Pham-Thi A.T. Effect of drought stress on lipid metabolism in the leaves of Arabidopsis thaliana (ecotype Columbia). Ann Bot 2004, vol. 94, no 3, pp. 345-351, doi: 10.1093/aob/mch150. Gigon A., Matos A.R., Laffray D., Zuily-Fodil Y., Pham-Thi A.T. Effect of drought stress on lipid metabolism in the leaves of Arabidopsis thaliana (ecotype Columbia). Ann Bot 2004, vol. 94, no 3, pp. 345-351, doi: 10.1093/aob/mch150. Leone A., Costa A., Grillo S., Tucci M., Horvarth I., Vigh L. Acclimation to Low Water Potential Determines Changes in Membrane Fatty Acid Composition and Fluidity in Potato Cells. Plant Cell Environ., 1996, vol. 19, pp. 1103-1109, doi: 10.1111/j.1365-3040.1996.tb00218.x. Leone A., Costa A., Grillo S., Tucci M., Horvarth I., Vigh L. Acclimation to Low Water Potential Determines Changes in Membrane Fatty Acid Composition and Fluidity in Potato Cells. Plant Cell Environ., 1996, vol. 19, pp. 1103-1109, doi: 10.1111/j.1365-3040.1996.tb00218.x. Жигачева И.В., Бинюков В.И., Миль Е.М., Крикунова Н.И., Расулов М.М., Албантова А.А., Генерозова И.П. Натрий μ2-дитиосульфато-тетранитрозилдиферрат тетрагидрат повышает устойчивость проростков гороха к тепловому стрессу. Физиол. Растений, 2022, т. 69, № 2. с. 198-207. Zhigacheva I.V., Binyukov V.I., Mil E.M., Krikunova N.I., Rasulov M.M., Albantova A.A., Generozova I.P. Sodium µ2-Dithiosulphate-Tetranitrosyl Diferrate Tetrahydrate Prevents Heat Shock-Induced Mitochondria Dysfunction., Russian Journal of Plant Physiology, 2022, vol. 69, pp. 38-46 (In Russ.). Saidi Y., Peter M., Finka A., Cicekli C., Vigh L., Goloubinoff P. Membrane lipid composition affects plant heat sensing and modulates Ca2+ -dependent heat shock response. Plant Signal Behav, 2010, vol. 5, no. 12, pp. 1530-1533, doi: 10.4161/psb.5.12.13163. Saidi Y., Peter M., Finka A., Cicekli C., Vigh L., Goloubinoff P. Membrane lipid composition affects plant heat sensing and modulates Ca2+ -dependent heat shock response. Plant Signal Behav, 2010, vol. 5, no. 12, pp. 1530-1533, doi: 10.4161/psb.5.12.13163. Falcone D.L., Ogas J.P., Somerville Ch.R. Regulation of membrane fatty acid composition by temperature in mutants of Arabidopsis with alterations in membrane lipid composition. BMC Plant Biol., 2004, vol. 4, pp. 17-24, doi: 10.1186/1471-2229-4-17. Falcone D.L., Ogas J.P., Somerville Ch.R. Regulation of membrane fatty acid composition by temperature in mutants of Arabidopsis with alterations in membrane lipid composition. BMC Plant Biol., 2004, vol. 4, pp. 17-24, doi: 10.1186/1471-2229-4-17. Плехова Н.Г., Сомова Л.М. Физиологическая роль оксида азота при инфекционном процессе. Успехи физиологических наук, 2012, т. 43, № 3, с. 62-81. Plekhova N.G., Somova L.M. The physiological role of nitric oxide in the infectious process. Advances in the physiological sciences, 2012, vol. 43, no. 3, pp. 62-68. (In Russ.). Файнгольд И.И., Котельникова Р.А., Смолина А.В., Полетаева Д.А., Солдатова Ю.В., Покидова О.В., Садков А.П., Санина Н.А., Алдошин С.М. Антиоксидантная активность тетранитрозильного комплекса железа с тиосульфатными лигандами и его влияние на каталитическую активность митохондриальных ферментов в опытах in vitro. ДАН, 2019, т. 488, № 5, с. 571-575. Faingold I.I., Kotelnikova R.A., Smolina A.V., Poletaeva D.A., Soldatova Yu.V., Pokidova O.V., Sadkov A.P., Sanina N.A., Aldoshin S.M. Antioxidant activity of tetranitrosyl iron complex with thiosulfate ligands and its effect on the catalytic activity of mitochondrial enzymes in experiments in vitro. Doklady Biochemistry and Biophysics, vol. 488, no. 1, pp. 342-345, doi: 10.1134/S1607672919050120. (In Russ.) Hancock J.T., Neill S.J. Nitric oxide: Its generation and interactions with other reactive signaling compounds. Plants (Basel), 2019, vol. 8, no. 2, рp. 41, doi: 10.3390/plants8020041307598233641. Hancock J.T., Neill S.J. Nitric oxide: Its generation and interactions with other reactive signaling compounds. Plants (Basel), 2019, vol. 8, no. 2, pp. 41, doi: 10.3390/plants8020041307598233641. Groß F., Durner J., Gaupels F. Nitric oxide, antioxidants and prooxidants in plant defence responses. Front Plant Sci, 2013, vol. 4, pp. 419, doi: 10.3389/fpls.2013.00419. Groß F., Durner J., Gaupels F. Nitric oxide, antioxidants and prooxidants in plant defence responses. Front Plant Sci, 2013, vol. 4, pp. 419, doi: 10.3389/fpls.2013.00419. Oemer G., Lackner K., Muigg K., Krumschnabel G., Watschinger K., Sailer S., Lindner H., Gnaiger E., Wortmann S.B., Werner E.R., Zschocke J., Kelle M.A. Molecular structural diversity of mitochondrial cardiolipins. PNAS, 2018, vol. 115, no. 16, pp. 4158-4163, doi: 0.1073/pnas.1719407115. Oemer G., Lackner K., Muigg K., Krumschnabel G., Watschinger K., Sailer S., Lindner H., Gnaiger E., Wortmann S.B., Werner E.R., Zschocke J., Kelle M.A. Molecular structural diversity of mitochondrial cardiolipins. PNAS, 2018, vol. 115, no. 16, pp. 4158-4163, doi: 0.1073/pnas.1719407115. Цыдендабаев В.Д., Иванова Т.В., Халилова Л.А., Куркова Е.Б., Мясоедов Н.А., Балнокин Ю.В. Жирнокислотный состав липидов вегетативных органов галофита Suaeda Altissima при разном уровне засоления. Физиология растений, 2013, т. 60, с. 700-711. Tsydendabaev V.D., Ivanova T.V., Khalilova L.A., Kurkova E.B., Myasoedov N.A., Balnokin Yu.V. Fatty acid composition of lipids in the vegetative organs of the halophyte Suaeda Altissima at different levels of salinity. Russian Journal of Plant Physiology, 2013, vol. 60, no. 5, pp. 661-671, doi: 10.1134/S1021443713050142. (In Russ.) Bach L., Faure J.D. Role of very-long-chain fatty acids in plant development, when chain length does matter. C R Biol., 2010, vol. 333, no. 4, pp. 361-370, doi: 10.1016/j.crvi.2010.01.014. Bach L., Faure J.D. Role of very-long-chain fatty acids in plant development, when chain length does matter. C R Biol., 2010, vol. 333, no. 4, pp. 361-370, doi: 10.1016/j.crvi.2010.01.014. Bach L., Gissot L., Marion J. et al. Very-long-chain fatty acids are required for cell plate formation during cytokinesis in Arabidopsis thaliana. J. Cell. Sci., 2011, vol. 124, no. 19, pp. 3223-3234, doi: 10.1242/jcs.074575. Bach L., Gissot L., Marion J. et al. Very-long-chain fatty acids are required for cell plate formation during cytokinesis in Arabidopsis thaliana. J. Cell. Sci., 2011, vol. 124, no. 19, pp. 3223-3234, doi: 10.1242/jcs.074575.