Севастополь, Севастополь, Россия
Севастополь, Севастополь, Россия
Dunaliella - род микроводорослей, развивающихся в гипергалинных водоемах. Существовать в таких условиях им позволяет высокая концентрация β-каротина и глицерола, выполняющих протекторные функции. Высокое накопление этих биологически активных веществ обуславливает перспективность использования D. salina в биотехнологии. Одним из наиболее перспективных с этой точки зрения штаммов коллекции IBSS -2 из ЦКП "Коллекция гидробионтов Мирового океана" ФИЦ ИнБЮМ был изучен с целью уточнения его таксономического статуса. Филогенетический анализ показал высокую степень гомологии с D salina CCAP 19/31, что позволяет отнести исследованный изолят к виду Dunaliella salina.
гидробионты, молекулярно-генетический анализ, филогения, Dunaliella salina
1. Масюк Н.П. Морфология, систематика, экология, географическое распространение рода Dunaliella Teod. К.: Наукова думка, 1973, 244 c. @@Masyuk N.P. Morphology, taxonomy, ecology, geographical distribution of the genus Dunaliella Teod. K.: Naukova Dumka, 1973, 244 p. (In Russ.)
2. Боровков А.Б. Зеленая микроводоросль Dunaliella salina Teod. (обзор). Экология моря, 2005, т. 67, c. 5-17. @@Borovkov A.B. Green microalgae Dunaliella salina Teod. (overview). Ecology of the sea, 2005, vol. 67, pp. 5-17. (In Russ.)
3. Highfield A., Ward A., Pipe R., Schroeder D. Molecular and phylogenetic analysis reveals new diversity of Dunaliella salina from hypersaline environments. Journal of the Marine Biological Association of the United Kingdom, 2021, vol. 101, no. 1, pp. 27-37. doi:https://doi.org/10.1017/S0025315420001319
4. Preetha K., John L., Subin C.S., Vijayan K.K. Phenotypic and genetic characterization of Dunaliella (Chlorophyta) from Indian salinas and their diversity. Aquat. Biosyst., 2012, vol. 8, no. 27. doi:https://doi.org/10.1186/2046-9063-8-27
5. Huelsenbeck J.P., Ronquist F. MRBAYES: Bayesian inference of phylogeny. Bioinformatics, 2001, vol. 17, pp. 754-755.
6. Emami K., Hack E., Nelson A., Brain C.M., Lyne F.M., Mesbahi E., Day J.G., Caldwell G.S. Proteomic-based biotyping reveals hidden diversity within a microalgae culture collection: An example using Dunaliella, 2015. doi:https://doi.org/10.1038/srep10036
7. Ben-Amotz A. Effect of irradiance and nutrient de ciency on the chemical composition of Dunaliella bardawil Ben Amotz and Avron (Volvocales, Chlorophyta). J. Plant. Physiol., 1987, vol. 131, pp. 479-487.
8. Assuncao P., Jaen-Molina R., Caujape-Castells J., de la Jara A., Carmona L., Freijanes K., Mendoza H. Molecular taxonomy of Dunaliella (Chlorophyceae), with a special focus on D. salina: ITS2 sequences revisited with an extensive geographical sampling. Aquat. Biosyst., 2012, vol. 8, no. 2. doi:https://doi.org/10.1186/2046-9063-8-2
9. Polle J.E.W., Jin E.S., Ben-Amotz A. The alga Dunaliella revisited: Looking back and moving forward with model and production organisms. Algal Res., 2020. doi:https://doi.org/10.1016/j.algal.2020.101948
10. Гудвилович И.Н., Боровков А.Б. Апробация двухстадийного культивирования Dunaliella salina (Teodoresco, 1905) в Севастопольском регионе. Юг России: экология, развитие, 2019, т. 14, № 2, c. 211-220. doi:https://doi.org/10.18470/1992-1098-2019-2-211-220 @@Goodvilovich I.N., Borovkov A.B. Approbation of two-stage cultivation of Dunaliella salina (Teodoresco, 1905) in the Sevastopol region. South of Russia: ecology, development, 2019, vol. 14, no. 2, pp. 211-220. (In Russ.) doi:https://doi.org/10.18470/1992-1098-2019-2-211-220
11. Borovkov A.B., Gudvilovich I.N., Avsiyan A.L. Scale-up of Dunaliella salina cultivation: from strain selection to open ponds. Journal of Applied Phycology, 2020, vol. 32, iss. 3, pp. 1545-1558.
