1. Yang R., Wei D., Xie J. Diatoms as cell factories for high-value products: chrysolaminarin, eicosapentaenoic acid, and fucoxanthin. Crit Rev Biotechnol, 2020, vol. 40, no. 7, pp. 993-1009. DOI: https://doi.org/10.1080/07388551.2020.1805402; EDN: https://elibrary.ru/HAXCMR

2. Тренкеншу Р.П. Рост микроводорослей при переходе от темноты к постоянному освещению. Вопросы современной альгологии, 2018, № 2(17).

3. Паламодова О.С. Динамика фотоадаптации некоторых видов диатомовых водорослей. Экология моря, 2009, вып. 78, с. 70-74. EDN: https://elibrary.ru/UKIWWH

4. Anning T., MacIntyre H.L., Pratt S.M., Sammes P.J., Gibb S., Geider R.J. Photoacclimation in the marine diatom Skeletonema costatum. Limnol. Oceanogr., 2000, vol. 45, no. 8, pp 1807-1817, doi:https://doi.org/10.4319/lo.2000.45.8.1807.

5. Wang W., Yu L.J., Xu C., Tomizaki T., Zhao S., Umena Y., Chen X., Qin X., Xin Y., Suga M., Han G., Kuang T., Shen J.R. Structural basis for blue-green light harvesting and energy dissipation in diatoms. Science, 2019, vol. 363, no. 6427, 598 p.

6. Kupper H., Seibert S., Parameswaran A. Fast, sensitive, and inexpensive alternative to analytical pigment HPLC: quantification of chlorophylls and carotenoids in crude extracts by fitting with Gauss peak spectra. Analyt. Chem, 2007, vol, 79, no. 20, pp. 7611-7627.

7. Тренкеншу Р.П., Лелеков А.С., Боровков А.Б., Новикова Т. М Унифицированная установка для лабораторных исследований микроводорослей. Вопросы современной альгологии, 2017, № 1(13).

8. Тренкеншу Р.П., Терсков И.А., Сидько Ф.Я. Плотные культуры морских микроводорослей. Известия Сибирского отделения Академии наук СССР. Серия биологических наук, 1981, т. 5, № 1, с. 75-82.

9. Jeffrey S.W., Mantoura R.F.C., Wright S.W. Phytoplankton pigments in oceanography: guidelines to modern methods. UNESCO, 1997, 661 p.

10. Merzlyak M.N., Naqvi K.R. On recording the true absorption and scattering spectrum of a turbid sample: application to cell suspensions of the cyanobacterium Anabaena variabilis. J. Photochem. Photobiol. B: Biology, 2000, vol. 58, pp. 123-129, doi:https://doi.org/10.1016/s1011-1344(00)00114-7. EDN: https://elibrary.ru/LFVJHL

11. Клочкова В.С., Лелеков А.С., Геворгиз Р.Г., Ширяев А.В., Бучельников А.С., Шупова Е.В. Изменение спектра оптической плотности накопительной культуры Arthrospira (Spirulina) platensis. Актуальные вопросы биологической физики и химии, 2021, т. 6, № 4, с. 543-547. EDN: https://elibrary.ru/AQDDHI

12. Геворгиз Р.Г., Шматок М.Г. Лелеков А.С. Расчёт КПД фотобиосинтеза у низших фототрофов. Непрерывная культура. Экология моря, 2005, вып. 70, c. 31-36. EDN: https://elibrary.ru/THJRVY

13. Тренкеншу Р.П., Лелеков А.С. Моделирование роста микроводорослей. Белгород: ООО «КОНСТАНТА», 2017, 152 с. EDN: https://elibrary.ru/XTJPCH

14. Чернышев Д.Н., Клочкова В.С., Лелеков А.С. Моделирование спектра поглощения культуры Phaeodactylum tricornutum Bohlin в красной области. Вопросы современной альгологии, 2023.

15. Лелеков А.С., Чернышев Д.Н., Клочкова В.С. Количественные закономерности роста накопительной культуры Arthrospira platensis. Математическая биология и биоинформатика, 2022, т. 17, № 1, с. 156-170, doi:https://doi.org/10.17537/2022.17.156 EDN: https://elibrary.ru/XTTLPU

16. Ефимова Т.В. Действие спектрального состава света на структурные и функциональные характеристики микроводорослей: автореф. дис. канд. биол. наук. Севастополь, 2021, 28 с. EDN: https://elibrary.ru/QCQHXG

17. Nymark M., Valle K.C., Brembu T., Hancke K, Winge P., Andresen K. et al. An Integrated Analysis of Molecular Acclimation to High Light in the Marine Diatom Phaeodactylum tricornutum. PLoS ONE, 2009, vol. 4, no. 11, p. e7743, doi:https://doi.org/10.1371/journal.pone.0007743.

18. Flynn K.J. A mechanistic model for describing dynamic multi-nutrient, light, temperature interaction in phytoplankton. J. Plan. Res, 2001, vol. 23, pp. 977-997, doi:https://doi.org/10.1093/PLANKT/23.9.977. EDN: https://elibrary.ru/IYRWOJ

19. Лелеков А.С., Тренкеншу Р.П. Моделирование динамики макромолекулярного состава микроводорослей в накопительной культуре. Компьютерные исследования и моделирование, 2023, т. 15, № 3, с. 739-756, doi:https://doi.org/10.20537/2076-7633-2023-15-3-739-756. EDN: https://elibrary.ru/RYULWB

20. Jallet D., Caballero M.A., Gallina A.A., Youngblood M., Peers G. Photosynthetic physiology and biomass partitioning in the model diatom Phaeodactylum tricornutum grown in a sinusoidal light regime. Algal Research, 2016, vol. 18, pp. 51-60, doi:https://doi.org/10.1016/j.algal.2016.05.014. EDN: https://elibrary.ru/YDPVXB