Мезенхимные стромальные клетки (МСК) представляют собой гетерогенную популяцию пролиферирующих недифференцированных клеток, которые способны к дифференцировке в клетки как минимум костной, хрящевой и жировой тканей. Несмотря на значительный прогресс в исследовании МСК, текущие представления об их рецепторных и сигнальных системах весьма ограничены. В данной работе показано, что аденозин стимулирует Са2+ сигнализацию в МСК, выделенных из жировой ткани человека. Установлена пороговая концентрация аденозина, охарактеризованы концентрационные зависимости амплитуды и лаг-периода ответов от концентрации агониста. Данные ингибиторного анализа в сочетании с несущественным влиянием наружного Са2+ на Сa2+ сигналы, инициируемые аденозином, свидетельствовали о том, что в МСК рецепторы аденозина сопряжены фосфоинозитидным каскадом преимущественно с выбросом депонированного Са2+ при незначительном вкладе входа наружного Са2+.
мезенхимные стромальные клетки, аденозиновые рецепторы
1. Berridge M.J., Bootman M.D., Roderick H.L. Calcium signalling: dynamics, homeostasis and remodelling. Nat Rev Mol Cell Biol., 2003, pp. 517-529
2. Clapham D.E. Calcium signaling. Cell., 2007, vol. 131, pp. 1047-1058.
3. Dupont G., Combettes L., Leybaert L. Calcium dynamics: Spatio-temporal organization from the subcellular to the organ level. Int Rev Cytol., 2007. vol. 261, pp. 193-245.
4. Harteneck С., Gollasch M. Pharmacological Modulation of Diacylglycerol-Sensitive TRPC3/6/7 сhannels. Curr Pharm Biotechnol., 2011, vol. 12, pp. 35-41.
5. Iino M. Spatiotemporal dynamics of Ca2+ signaling and its physiological roles. Proc Jpn Acad Ser B Phys Biol Sci., 2010, pp. 244-256.
6. Kawamoto E.M., Vivar C., Camandola S. Physiology and pathology of calcium signaling in the brain. Front Pharmacol., 2012, vol. 3, p. 61.
7. Kotova P.D., Sysoeva V.Y., Rogachevskaja O.A., Bystrova M.F., Kolesnikova A.S., Tyurin-Kuzmin P.A., Fadeeva J.I., Tkachuk V.A., Kolesnikov S.S. Functional expression of adrenoreceptors in mesenchymal stromal cells derived from the human adipose tissue. Biochim Biophys Acta., 2014, vol. 1843, pp. 1899-1908.
8. Mustafa T., Walsh J., Grimaldi M., Eiden L.E. PAC1hop receptor activation facilitates catecholamine secretion selectively through 2-APB-sensitive Ca2+ channels in PC12 cells. Cell Signal., 2010, vol. 22, pp. 1420-1426.
9. Perkins W.J., Kost S., Danielson M. Prolonged NO treatment decreases α-adrenoreceptor agonist responsiveness in porcine pulmonary artery due to persistent soluble guanylyl cyclase activation. Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol., 2009, vol. 296, pp. L666-L673.
10. Xu S.-Z., Zeng F., Boulay G., Grimm C., Harteneck C., Beech D.J. Block of TRPC5 channels by 2-aminoethoxydiphenyl borate: a differential, extracellular and voltage-dependent effect. Br J Pharmacol., 2005, vol. 145, pp. 405-414.
