Исследовано влияние озонированного физиологического раствора (ОФР) с концентрацией озона в озоно-кислородной смеси 400 мкг/л, вводимого внутрибрюшинно крысам-самцам стока Sprague Dawley, на жирнокислотный состав плазмы крови, печени и солидной карциномы печени РС-1. Обнаружено, в плазме крови опухоленосителей увеличивалось количество докозагексаеновой кислоты, сопровождавшееся снижением количества пальмитиновой и пальмитолеиновой кислот. После воздействия на опухоленосителей ОФР количество докозагексаеновой кислоты снижалось до уровня интактных животных. Изменений количества жирных кислот в печени и опухолевой ткани не происходило ни в одном варианте исследования. Наличие опухоли у животных приводило к снижению активности каталазы в печени. Воздействие ОФР приводило к еще большему снижению активности каталазы в печени интактных животных и опухоленосителей. Предполагается, что воздействие ОФР, как и развитие опухоли, запускают стресс-индуцированные тканеспецифичные свободнорадикальные реакции в организме крыс, которые зависят от типа опухоли и стадии опухолевого роста. Полученные данные указывают на необходимость корректной дозировки ОФР для управления интенсивностью и направленностью окислительных процессов при опухолевом росте.
карцинома печени, озон, озонированный физиологический раствор, жирные кислоты, супероксиддисмутаза, каталаза
1. Rodrigues C., Milkovic L., Bujak I.T., Tomljanovic M., Soveral G., Cipak Gasparovic A. Lipid profile and aquaporin expression under oxidative stress in breast cancer cells of different malignancies. Oxid. Med. Cell Longev., 2019, vol. 11, p. 2061830. doi:https://doi.org/10.1155/2019/2061830
2. Yan L.J. Positive oxidative stress in aging and aging-related disease tolerance. Redox Biol., 2014, vol. 2C, pp. 165-169.
3. Liu C., Cao Y., Cheng Y., Wang D., Xu T., Su L., Zhang X., Dong H. An open source and reduce expenditure ROS generation strategy for chemodynamic/photodynamic synergistic therapy. Nat.Commun., 2020, vol. 11, p. 1735. doi:https://doi.org/10.1038/s41467-020-15591-4
4. Alvarez R.A., Berra L., Gladwin M.T. Home nitric oxide therapy for COVID-19. Am. J. Respir. Crit. Care Med., 2020, vol. 202, pp. 16-20. doi:https://doi.org/10.1164/rccm.202005-1906ED
5. Щербатюк Т.Г. Озонотерапия злокачественных новообразований: за и против. Нижегородский медицинский журнал, 2003, т. 1, с. 52-56. @@Shcherbatyuk T.G. Ozone therapy for malignant neoplasms: pros and cons. Nizhny Novgorod Medical Journal, 2003, vol. 1, pp. 52-56. (In Russ.)
6. Буреш Я., Бурешова О., Хьюстон Д.П. Методика и основные эксперименты по изучению мозга и поведения. Высшая школа, М., 1991. @@Buresh J., Bureshova O., Houston D.P. Methods and Basic Experiments for the Study of Brain and Behavior. Higher School, Moscow, 1991. (In Russ.)
7. Андронова Н.В., Волконский М.В., Калишьян М.С., Трещалина Е.М. Методика внутриартериальной инфузии крысам с внутримышечно трансплантированной опухолью. Российский биотерапевтический журнал, 2012, т. 11, с. 19-21. @@Andronova N.V., Volkonsky M.V., Kalishyan M.S., Treshchalina E.M.Intra-arterial infusion technique in rats with intramuscularly transplanted tumor.Russian Biotherapeutic Journal, 2012, vol. 11, pp. 19-21. (In Russ.)
8. Щербатюк Т.Г., Жукова (Плеханова) Е.С., Никитина Ю.В., Гапеев А.Б. Окислительная модификация белков в тканях крыс при опухолевом росте в условиях озоно-фотодинамического воздействия. Биофизика, 2020, vol. 65, pp. 367-375. @@Shcherbatyuk T.G., Zhukova (Plekhanova) E.S., Nikitina Yu.V., Gapeev A.B. Oxidative modification of proteins in rat tissues during tumor growth under conditions of ozone-photodynamic exposure. Biophysics, 2020, vol. 65, pp. 367-375. (In Russ.)
9. Буранов С.Н., Горохов В.В., Карелин В.И., Селемир В.Д. Устройство для озонотерапии, Патент РФ на изобретение №2249445/10.04.053, Бюл. № 10, 2003. @@Buranov S.N., Gorokhov V.V., Karelin V.I., Selemir V.D. Device for ozone therapy, RF patent for invention №2249445 / 10.04.053, Bul. no. 10, 2003. (In Russ.)
10. Кулагина Т.П., Ариповский А.В., Гапеев А.Б. Изменение жирнокислотного состава клеток тимуса, печени, плазмы крови и мышечной ткани у мышей с солидной формой карциномы Эрлиха. Биохимия, 2012, т. 77, с. 231-239. @@Kulagina T.P., Aripovsky A.V., Gapeev A.B. Changes in the fatty acid composition of thymus cells, liver, blood plasma and muscle tissue in mice with solid Ehrlich carcinoma. Biochemistry, 2012, vol. 77, pp. 231-239. (In Russ.)
11. Арутюнян А.В., Дубинина Е.Е., Зыбина Н.Н. Методы оценки свободнорадикального окисления и антиоксидантной системы организма, ИКФ «Фолиант», СПб, 2000. @@Harutyunyan A.V., Dubinina E.E., Zybina N.N. Methods for assessing free radical oxidation and the antioxidant system of the body, IKF "Foliant", St. Petersburg, 2000. (In Russ.)
12. Drabkin, D. The standardization of hemoglobin measurement. Am. J. Med. Sci., 1949, vol. 217, p. 710.
13. Qiu J.F., Zhang K.L., Zhang X.J., Hu Y.J., Li P., Shang C.Z., Wan J.B. Abnormalities in plasma phospholipid fatty acid profiles of patients with hepatocellular carcinoma. Lipids, 2015, vol. 50, pp. 977-985. doi:https://doi.org/10.1007/s11745-015-4060-6
14. Kuban-Jankowska A., Gorska-Ponikowska M., Sahu K.K., Kostrzewa T., Wozniak M., Tuszynski J. Docosahexaenoic acid inhibits PTP1B phosphatase and the viability of MCF-7 breast cancer cells. Nutrients, 2019, vol. 11, p. E2554. doi:https://doi.org/10.3390/nu11112554
15. Song E.A., Kim H. Docosahexaenoic acid induces oxidative DNA damage and apoptosis, and enhances the chemosensitivity of cancer cells.Int. J. Mol. Sci., 2016, vol. 17, p. E1257.
16. Che M., Wang R., Li X., Wang H.Y., Zheng X.F.S. Expanding roles of superoxide dismutases in cell regulation and cancer. Drug Discov. Today, 2016, vol. 21, pp. 143-149. doi:https://doi.org/10.1016/j.drudis.2015.10.001
17. Yamaguchi Y., Sato K., Endo H. Depression of catalase gene expression in the liver of tumor bearing nude mice. Biochem. Biophys. Res.Commun., 1992, vol. 89, pp. 1084-1089.
