Экспериментально показано, что оптическая плотность ( D 750) суспензии Porphyridium purpureum и абсолютно сухой вес связаны линейной зависимостью. Методом наименьших квадратов рассчитан коэффициент связи оптической плотностью D 750 и сырой массы культуры, который равен 0,051 (R2=0,99). Учитывая долю воды в сырой массе P. purpureum (0,132±0.01, n=5), можно записать связь оптической плотности и сухой массы P. purpureum : D750 = 0,395 · Bсух , где Bсух - плотность культуры, выраженная в граммах сухой массы на литр. Данное выражение позволяет по оптической плотности P. purpureum определить сухую массу клеток в культуре. Отмечено, что оценка биомассы P. purpureum по оптической плотности культуры на КФК-3 зависит от положения кюветы в кюветодержателе и может изменять показания прибора в 1,9 раз, так как при использовании КФК-3 происходит измерение суммы величин оптической плотности и рассеяния света (ослабление). Таким образом, разработан экспресс метод оценки плотности биомассы P. purpureum по оптической плотности.
методы измерения плотности, оптическая плотность, красные икроводоросли
1. Абдуллаев А.А., Семиненко В.Е. Интенсивная культура Dunaliella salina Teod и некоторые ее физиологические характеристики. Физиология растений, 1974, т. 21, вып. 6, с. 1145-1152. @@Abdullaev A.A., Seminenko V.E.Intensive culture of Dunaliella salina Teod and some of its physiological characteristics. Fiziologiya rasteniy, 1974, vol. 21, iss. 6, pp. 1145-1152. (In Russ.)
2. Геворгиз Р.Г., Алисиевич А.В., Шматок М.Г. Оценка биомассы Spirulina platensis (Nordst.) Geitl по оптической плотности культуры. Экология моря, 2005, вып. 70, с. 96-106. @@Gevorgiz R.G., Alisievich A.V., Shmatok M.G. Estimate of the biomass of Spirulina platensis (Nordst.) Geitl. by optical density of culture. Ekologiya moray, 2005, vol. 70, pp. 96-106. (In Russ.)
3. Геворгиз Р.Г., Железнова С.Н., Никонова Л.Л., Бобко Н.И., Нехорошев М.В. Оценка плотности культуры фототрофных микроорганизмов методом йодатной окисляемости. Севастополь, 2015, 31 с. @@Gevorgiz R.G., Zheleznova S.N., Nikonova L.L., Bobko N.I., Nekhoroshev M.V. Evaluation of the culture density of phototrophic microorganisms by the method of iodate oxidizability. Sevastopol, 2015, 31 p. (In Russ.)
4. Wang S., Verma S.K., Said I.H., Thomsen L., Ullrich M.S., Kuhnert N. Changes in the fucoxanthin production and protein profiles in Cylindrotheca closterium in response to blue light-emitting diode light. Microbial Cell Factories, 2018, vol. 17, iss. 1, pp. 1-13. DOI:https://doi.org/10.1186/s12934-018-0957-0
5. Balti R., Le Balc’h R., Brodu N., Gilbert M., Le Gouic B., Le Gall S., Sinquin C., Masse A. Concentration and purification of Porphyridium cruentum exopolysaccharides by membrane filtration at various cross-flow velocities. Process Biochemistry, 2018, vol. 74, pp. 175-184. DOI:https://doi.org/10.1016/j.procbio.2018.06.021
6. Li T., Xu J., Wu H., Jiang P., Chen Z., Xiang W. Growth and biochemical composition of Porphyridium purpureum SCS-02 under different nitrogen concentrations. Marine Drugs, 2019, vol. 17, iss. 2, pp. 1-16.
7. Rodas-Zuluaga L.I., Castillo-Zacarías C., NúñezGoitia G., Martínez-Prado M.A., Rodríguez-Rodríguez J., LópezPacheco I.Y., Sosa-Hernández J.E., Iqbal H.M.N., Parra-Saldívar R. Implementation of kLa-Based strategy for Scaling Up Porphyridium purpureum (red marine microalga) to produce high-value phycoerythrin, fatty acids, and proteins. Marine Drugs, 2021, vol. 19, iss. 6, pp. 1-15. DOI:https://doi.org/10.3390/md19060290
8. Тренкеншу Р.П., Терсков И.А., Сидько Ф.Я. Плотные культуры морских микроводорослей. Известия Сибирского отделения Академии наук СССР. Серия биологических наук, 1981, т. 5, № 1, с. 75-82. @@Trenkenshu R.P., Terskov I.A., Sidko F.Ya. Dense cultures of marine microalgae. Bulletin of the Siberian Branch of the USSR Academy of Sciences. Biological Science Series, 1981, vol. 5, iss. 1, pp. 75-82. (In Russ.)
9. Lu L., Yang G., Zhu B., Pan K. A comparative study on three quantitating methods of microalgal biomass. Indian Journal of Geo-Marine Sciences, 2017, vol. 46, iss. 1, pp. 2265-2272.
10. Мельников С.С., Самович Т.В., Мананкина Е.Е., Будакова Е.А. Влияние чередования световых и темновых периодов на продуктивность Spirulina (Arthrospira) platensis (Nordst.) Geitler. Альгология, 2012, т. 22, № 2, с. 121-130. http://dspace.nbuv.gov.ua/handle/123456789/64212 @@Melnikov S.S., Samovich T.V., Manankina E.E., Budakova E.A. Influence of light and dark periods alternation on production of Spirulina (Arthrospira) platensis (Nordst.) Geitler. Algologiya, 2012, vol. 22, iss. 2, pp. 121-130. (In Russ.)
11. Сидько Ф.Я., Ерошин Н.С. Определение концентрации пигментов и числа клеток во взвеси водорослей на фотоэлектроколориметре ФЭКН-57. Управляемое культивирование микроводорослей. М.: Наука, 1964, c. 38-42. @@Sidko F.Ya., Eroshin N.S. Determination of the concentration of pigments and the number of cells in a suspension of algae using a FEKN-57 photoelectric colorimeter. Guided microalgae cultivation. Moscow: Nauka, 1964, pp. 38-42. (In Russ.)
12. Сидько Ф.Я., Ерошин Н.С., Белянин В.Н. Датчик оптической плотности, изготовленный на базе фотоэлектроколориметра ФЭКМ. Непрерывное управляемое культивирование микроорганизмов. Москва: Наука, 1967, с. 31-33. @@Sidko F.Ya., Eroshin N.S., Belyanin V.N. Optical density sensor based on the FEKM photoelectric colorimeter. Continuous controlled cultivation of microorganisms. Moscow: Nauka, 1967, pp. 31-33. (In Russ.)
