В работе исследован рост накопительной культуры Phaeodactylum tricornutum в условиях естественного освещения. Эксперимент проводился в районе города Севастополя в горизонтальном фотобиореакторе в зимний период. Все внешние факторы (температура, pH, количество биогенных элементов питательной среды) находились в оптимальном для данного вида диапазоне. Единственной вариабельной величиной являлся приток солнечной радиации. В эксперименте определяли изменения биомассы феодактилума и притока солнечной радиации в течение девяти суток. Показано, что средняя скорость роста составила 2,37 г СВ м-2 сут-1, а прирост плотности Ph. tricornutum за световой день - 4 - 8 г СВ/м2. Величина ночной потери биомассы в среднем равнялась 18 % от текущей биомассы, а потери от дневного прироста достигали 100 %. Сравнение полученных значений с литературными данными показало, величина продуктивность определяется притоком солнечной радиации в области ФАР для данной географической широты. Величина суточного прироста культуры и ночные потери биомассы определяются её биохимическим составом.
микроводоросли, приток солнечной радиации, ночная потеря биомассы
1. Benavides A.M.S., Torzillo G., Kopecky J., Masojı´dek J. Productivity and biochemical composition of Phaeodactylum tricornutum (Bacillariophyceae) cultures grown outdoors in tubular photobioreactors and open ponds. Biomass and Bioenergy, 2013, vol. 54, pp. 115-122. doi:https://doi.org/10.1016/2013.03.016
2. Lebeau T., Jean-Michel R.L. Diatom cultivation and biotechnologically relevant products. Part I: cultivation at various scales. Applied Microbiology and Biotechnology, 2003, vol. 60, no. 6, pp. 612-623. doi:https://doi.org/10.1007/s00253-002-1176-4
3. Lebeau T., Jean-Michel R.L. Diatom cultivation and biotechnologically relevant products. Part II: current and putative products. Applied Microbiology and Biotechnology, 2003, vol. 60, no. 6, pp. 624-32. doi:https://doi.org/10.1007/s00253-002-1177-3
4. Kikuchi M., Hirano A., Kunito Sh., Kawakami Y. Fucoxanthin, an antioxidative substance from marine diatom Phaeodactylum tricornutum. Journal of Marine Biotechnology, 1995, vol. 3, no. 1, pp. 132-135.
5. Kim S.M., Jung Y.-J., Kwon Oh.-N., Cha K.H., Um B.-H., Chung D., Pan Ch.-H. A Potential Commercial Source of Fucoxanthin Extracted from the Microalga Phaeodactylum tricornutum. Applied Biochemistry and Biotechnology, 2012, vol. 166, no. 7, pp. 1843-1855. doi:https://doi.org/10.1007/s12010-012-9602-2
6. Alonso D.L., Belarbi E.H., Fernandez S.J., Rodriguez-Ruiz J., Grima M.E. Acyl lipid composition variation related to culture age and nitrogen concentration in continuous culture of the microalga Phaeodactylum tricornutum. Phytochemistry, 2000, vol. 54, no. 5, pp. 461-471.
7. Mata T.M., Martins A.A., Caetano N.S. Microalgae for biodiesel production and other applications: A review. Renewable and Sustainable Energy Reviews, 2010, vol. 14, pp. 217-232. doi https://doi.org/10.1016/2009.07.020
8. Kudo I., Miyamoto M., Noiri Y., Maita Y.Combined effects of temperature and iron on the growth and physiology of the marine diatom Phaeodactylum tricornutum (Bacillariophyceae). Journal of Phycology, 2000, vol. 36, no. 6, pp. 1096-1102.
9. Okay O.S., Gaines A., Davie A.M. The Growth of Continuous Cultures of the Phytoplankton Phaeodactylum Tricornutum. Turkish J. Eng. Env. Sci, 2003, vol. 27, pp. 145-155.
10. Borowitzka M.A., Borowitzka L.J. Micro-algal biotechnology. Cambridge: Cambridge University Press, 1992, 481 p.
11. Справочник по климату СССР. Вып. 10. Украинская ССР. Часть 1. Солнечная радиация, радиационный баланс и солнечное сияние. Л.: Гидрометиздат, 1966, 124 с. @@Handbook on climate USSR. Issue 10. Ukrainian SSR. Part 1. Solar radiation, radiation balance and solar radiance. L.: Gidrometizdat, 1966, 124 p. (In Russ.)
12. Тренкеншу Р.П., Лелеков А.С. Моделирование роста микроводорослей в культуре. Севастополь: ООО "Константа-Принт", 2017, 152 с. @@Trenkenshu R.P., Lelekov A.S. Modeling of microalgae growth in culture. Sevastopol-ООО "Konstanta-Print", 2007, 152 p. (In Russ.)
13. Тренкеншу Р.П., Терсков И.А., Сидько Ф.Я. Плотные культуры морских микроводорослей. Изв. СО АНСССР (сер. Биол.), 1981. № 15, вып. 3, c. 75-82. @@Trenkenshu R.P., Тerskov. I.A., Sidko F.Yа. Dense cultures of marine microalgae. Izv. SO ANSSSR (ser. Biol.), 1981, no. 15, vol. 3, pp. 75-82. (In Russ.)
14. Чекушкин А.А., Лелеков А.С., Тренкеншу Р.П. Моделирование суточных колебаний освещённости в районе г. Севастополя. Актуальные вопросы биологической химии и физики, 2018, т. 3, № 3, с. 547-552. @@Chekushkin A.A. Lelekov A.S. Trenkenshu R.P. Modeling of daily fluctuations of illumination in the area of Sevastopol. Actual problems of biological chemistry and physics, 2018, vol. 3, no. 3, pp. 547-552. (In Russ.)
15. Чекушкин А.А., Лелеков А.С., Геворгиз Р.Г. Сезонная динамика предельной продуктивности в горизонтальном фотобиореакторе. Актуальные вопросы биологической химии и физики, 2020, т. 3, № 3, с. 405-412. @@Chekushkin A.A., Lelekov A.S., Gevorgiz R.G. Seasonal dynamics of productivity in horizontal photobiosynthesis. Actual problems of biological chemistry and physics, 2020, vol. 3, no. 3, pp. 405-412. (In Russ.)
16. Авсиян А.Л. Динамика потери биомассы в культуре Arthrospira platensis (Nordst.) Geitler (Cyanoprokaryota) в темновых условиях. Альгология, 2014, т. 24, № 3, с. 417-420. @@Avsiyan A.L. Dynamics of biomass loss in the culture of Arthrospira platensis (Nordst.) Geitler (Cyanoprokaryota) under dark conditions. Algology, 2014, vol. 24, no. 3, pp. 417-420. (In Russ.)
17. Torzillo G., Sacchi A., Materassi R. et al. Effect of temperature on yield and night biomass loss in Spirulina piatensis grown outdoors in tubular photobioreactors. Journal Applied Phycology, 1991, vol. 3, pp. 103-109.
18. Jallet D., Caballero M.A., Gallina A.A., Youngblood M., Peers G. Photosynthetic physiology and biomass partitioning in the model diatom Phaeodactylum tricornutum grown in a sinusoidal light regime. Algal Research, 2016, vol. 18, pp. 51-60. doi:https://doi.org/10.1016/2016.05.014
