Новосибирск, Новосибирская область, Россия
Новосибирск, Новосибирская область, Россия
Новосибирск, Новосибирская область, Россия
Новосибирск, Новосибирская область, Россия
Сердечно-сосудистые заболевания занимают лидирующее место среди причин смертности населения. Основные осложнения течения заболевания этой группы тесно связаны с изменением в работе системы гемостаза, в том числе её тромбоцитарного звена. Для предотвращения развития осложнений, связанных с нарушениями в работе системы гемостаза, применяется антитромбоцитарная терапия. В данной работе рассматривается поведение популяции тромбоцитов условно здоровых доноров до и после применения двух основных типов терапевтических агентов: ацетилсалициловой кислоты и клопидогрела. С использованием метода сканирующей проточной цитометрии производилось измерение индекса формы одиночных тромбоцитов с последующем построением распределений по данной характеристике для проб в нативном состоянии и после воздействия малого количества аденозиндифосфата - агониста активации. По изменению в распределениях индекса формы оценивается чувствительность тромбоцитов к агонисту активации до и после применения краткого курса терапии. По результату оценки пороговое значение начала изменения формы тромбоцитов и чувствительность при применении ацетилсалициловой кислоты увеличились, а при применении клопидогрела уменьшились. Продемонстрированный подход для оценки чувствительности может быть полезен как при оценке степени эффективности, применяемой антитромбоцитарной терапии, так и при диагностике наличия осложнений течения заболеваний сердечно-сосудистой системы со стороны тромбоцитарного звена системы гемостаза.
тромбоциты, сканирующая проточная цитометрия, антитромбоцитарная терапия, АДФ
1. Hoffman M., Iii D.M.M. A Cell-based Model of Hemostasis. Thromb Haemost., 2001, vol. 85, no. 6, pp. 958-965, doi:https://doi.org/10.1055/s-0037-1615947.
2. Rondina M.T., Zimmerman G.A. 28 - The Role of Platelets in Inflammation Platelets (Fourth Edition). Academic Press, 2019, pp. 505-522, doi:https://doi.org/10.1016/B978-0-12-813456-6.00028-X.
3. Li Z., Riesenberg B., Metelli A., Li A., Wu B.X. 30 - The Role of Platelets in Tumor Growth, Metastasis, and Immune Evasion. Platelets (Fourth Edition). Academic Press, 2019, pp. 547-561, doi:https://doi.org/10.1016/B978-0-12-813456-6.00030-8.
4. Purvis J.E., Chatterjee M.S., Brass L.F., Diamond S.L. A molecular signaling model of platelet phosphoinositide and calcium regulation during homeostasis and P2Y1 activation. Blood, 2008, vol. 112, no. 10, pp. 4069-4079, doi:https://doi.org/10.1182/blood-2008-05-157883.
5. Moskalensky A.E., Litvinenko A.L. The platelet shape change: biophysical basis and physiological consequences. Platelets, 2018, vol. 0, no. 0, pp. 1-6, doi:https://doi.org/10.1080/09537104.2018.1514109.
6. Lordkipanidze M., Harrison P. Platelet Function Tests. Platelets in Thrombotic and Non-Thrombotic Disorders: Pathophysiology, Pharmacology and Therapeutics: an Update. Cham: Springer International Publishing, 2017, pp. 559-570, doi:https://doi.org/10.1007/978-3-319-47462-5.
7. Noris P., Zaninetti C. Platelet Counting and Measurement of Platelet Dimensions Platelets in Thrombotic and Non-Thrombotic Disorders: Pathophysiology, Pharmacology and Therapeutics: an Update. Cham: Springer International Publishing, 2017, pp. 571-587, doi:https://doi.org/10.1007/978-3-319-47462-5.
8. Maltsev V.P. Scanning flow cytometry for individual particle analysis. Review of Scientific Instruments, 2000, vol. 71, no. 1, pp. 243-255, doi:https://doi.org/10.1063/1.1150190.
9. Chernova D.N., Konokhova A.I., Novikova O. I., Yurkin M.A., Strokotov D.I., Karpenko A.A., Chernyshev A.V., Maltsev V.P. Chylomicrons against light scattering: The battle for characterization. Journal of Biophotonics, 2018, vol. 11, no. 10, doi:https://doi.org/10.1002/jbio.201700381.
10. Gilev K.V., Yastrebova E.S., Strokotov D.I., Yurkin M.A., Karmadonova,N.A., Chernyshev A.V., Lomivorotov V.V., Maltsevet V.P. Advanced consumable-free morphological analysis of intact red blood cells by a compact scanning flow cytometer. Cytometry Part A, 2017, vol. 91, no. 9, pp. 867-873, doi:https://doi.org/10.1002/cyto.a.23141.
11. Strokotov D.I., Yurkin M.A., Gilev K.V., van Bockstaele D. R., Hoekstra A.G., Rubtsov N.B, Maltsev V.P. Is there a difference between T- and B-lymphocyte morphology? J. Biomed. Opt., 2009, vol. 14, no. 6, doi:https://doi.org/10.1117/1.3275471.
12. Moskalensky A.E.,Yurkin M.A., Konokhova A.I., Strokotov D.I., Nekrasov V.M., Chernyshev A.V., Tsvetovskaya G.A, Chikova E.D, Maltsev V.P. Accurate measurement of volume and shape of resting and activated blood platelets from light scattering. Journal of biomedical optics, 2013, vol. 18, no. 1. doi:https://doi.org/10.1117/1.JBO.18.1.017001.
13. Litvinenko A.L., Moskalensky A.E., Karmadonova N.A., Nekrasov V.M., Strokotov D.I., Konokhova A.I., Yurkin M.A., Pokushalov E.A.,Chernyshev V.A.,Maltsev V.P. Fluorescence-free flow cytometry for measurement of shape index distribution of resting, partially activated, and fully activated platelets. Cytometry, 2016, vol. 89, no. 11, pp. 1010-1016, doi:https://doi.org/10.1002/cyto.a.23003.
14. Litvinenko A.L., Nekrasov V.M., Strokotov D.I., Moskalensky A.E., Chernyshev a. V., Shilova A.N., Karpenko A.A., Maltsev V.P. Blood platelet quantification by light scattering: from morphology to activation. Anal. Methods. The Royal Society of Chemistry, 2021, vol. 13, no. 29, pp. 3233-3241, doi:https://doi.org/10.1039/D1AY00431J.
15. Dmitrieff S., Alsinaa A., Mathura A., Nedelec J.N. Balance of microtubule stiffness and cortical tension determines the size of blood cells with marginal band across species PNAS. National Academy of Sciences, 2017, vol. 114, no. 17, pp. 4418-4423, doi:https://doi.org/10.1073/pnas.1618041114.
16. Sewell R., Ibbotson M., Phillips R., Carson P. High mean platelet volume after myocardial infarction: is it due to consumption of small platelets? 6458 British medical journal (Clinical research ed.), 1984, vol. 289, no. 6458, pp. 1576-1578, doi:https://doi.org/10.1136/bmj.289.6458.1576.
17. Kroll M.H., Schafer A.I. Platelets and shear stress. Blood, 1996, vol. 88, no. 5, pp. 1525-1541, doi:https://doi.org/10.1182/blood.V74.4.1181.1181.
18. Egidi M.G., D'Alessandro A., Mandarello G., Zolla L. Troubleshooting in platelet storage temperature and new perspectives through proteomics. Blood Transfus, 2010, vol. 8, no. 3, pp. s73-s81, doi:https://doi.org/10.2450/2010.012S.
19. Jones D.R., Perttunen C.D., Stuckman B.E. Lipschitzian optimization without the Lipschitz constant. Journal of Optimization Theory and Applications,1993, vol. 79, no. 1, pp. 157-181, doi:https://doi.org/10.1007/BF00941892.
