Нижний Новгород, Нижегородская область, Россия
Комбинированная термическая травма (КТТ), включающая термоингаляционное воздействие и ожоги кожных покровов, часто встречается у пострадавших, поступающих в ожоговые центры. Наличие ингаляционной травмы отягощает течение КТТ, вызывая развитие легочных осложнений, нарушение окислительного метаболизма и полиорганную недостаточность. Целью исследования было изучение особенностей регуляции ферментов антиоксидантной защиты в крови при экспериментальной комбинированной термической травме под воздействием оксида азота. Эксперимент проведен на 30 белых крысах-самцах линии Wistar. Животных разделили на 3 равные по численности группы: 1 – интактные крысы; 2 – контрольная – животные с КТТ; 3 – опытная – животные с КТТ, получавшие ингаляции NO. Крысам под наркозом (Золетил 100 (60 мг/кг) + Ксила (6 мг/кг)) наносили контактный ожог (20% поверхности тела) и термоингаляционное воздействие. Животных выводили из эксперимента после КТТ на 10 сутки. В эритроцитах крови определяли активность супероксиддимсутазы (СОД), каталазы, глутатионредуктазы (ГР) и глюкозо-6-фосфатдегидрогеназы (Гл-6-фДГ). Ингаляционно-наружное воздействие NO при КТТ осуществляли ежедневно в течение 10 дней по 10 мин, скорость подачи газовой смеси – 2 л/мин. Рассчитывали кинетические параметры ферментативной реакции. Статистическую обработку результатов проводили с помощью Statistica 6.0 (Statsoft Inc., USA). Показано, что на фоне снижения активности антиоксидантных ферментов в крови при КТТ наибольшее ингибирование отмечено для каталазы. Кинетическим методом анализа впервые установлен характер ингибирования ферментов при КТТ: для СОД и каталазы в эритроцитах – двухпараметрически согласованное, для ГР и Гл-6-фДГ – каталитическое. Ингаляции NO при КТТ активировали СОД, каталазу, ГР и Гл-6-фДГ.
комбинированная термическая травма, оксид азота, ферменты антиоксидантной защиты
1. Крылов К.М., Орлова О.В., Шлык И.В. Алгоритм действий по оказанию медицинской помощи пострадавшим с ожогами на догоспитальном этапе. Скорая медицинская помощь, 2010, № 2, с. 55-59.; EDN: https://elibrary.ru/MBGJZL
2. Глуткин А.В., Ковальчук В.И. Термический ожог кожи у детей раннего возраста (опыт эксперимента и клиники). Монография. Гродно: ГрГМУ, 2016, 180 с.; EDN: https://elibrary.ru/XAVSON
3. Шень Н.П. Ожоги у детей. М.: Триада-Х, 2011, 148 с.; EDN: https://elibrary.ru/QLZWOV
4. Mendonca Machado N., Gragnani A., Masako Ferreira L. Burns, metabolism and nutritional requirements. Nutr. Hosp., 2011, vol. 26, no. 4, pp. 692-700, doi:https://doi.org/10.1590/S0212-16112011000400005.
5. Mokline A., Abdenneji A., Rahmani I. , Gharsallah L., Tlaili S., Harzallah I., Gasri B., Hamouda R., Messadi A.A. Lactate: prognostic biomarker in severely burned patients. Annals of Burns and Fire Disasters, 2017, vol. 30, no. 1, pp. 35-38.
6. Пожилова Е.В., Новиков В.Е. Синтаза оксида азота и эндогенный оксид азота в физиологии и патологии клетки. Вестник Смоленской государственной медицинской академии, 2015, т. 14, № 4, с. 35-41.; EDN: https://elibrary.ru/VNVYFZ
7. Мартусевич А.К., Соловьева А.Г., Перетягин С.П., Карелин В.И., Селемир В.Д. Влияние NO-содержащего газового потока на некоторые параметры энергетического метаболизма эритроцитов. Бюллетень экспериментальной биологии и медицины, 2014, т. 158, № 7, с. 40-42.; EDN: https://elibrary.ru/SHNUCJ
8. Перетягин С.П., Мартусевич А.К., Гришина А.А., Соловьева А.Г., Зимин Ю.В. Лабораторные животные в экспериментальной медицине. Монография. Нижний Новгород: ФГУ «ННИИТО» Минздравсоцразвития России, 2011, 300 с.; EDN: https://elibrary.ru/SIXODX
9. Мартусевич А.К., Соловьева А.Г., Перетягин С.П., Давыдюк А.В. Влияние динитрозильных коиплексов железа на метаболические параметры крови животных с экспериментальной термической травмой. Биофизика, 2014, т. 59, № 6, с. 1173-1179.; EDN: https://elibrary.ru/TGWDJF
10. Сирота Т.В. Стандартизация и регуляция скорости супероксидгенерирующей реакции автоокисления адреналина, используемой для определения про/антиоксидантных свойств различных материалов. Биомедицинская химия, 2016, т. 62, № 6, с. 650-655.; DOI: https://doi.org/10.18097/PBMC20166206650; EDN: https://elibrary.ru/XHTVQD
11. Сибгатуллина Г.В., Хаертдинова Л.Р., Гумерова Е.А., Акулов А.Н., Костюкова Ю.А., Никонорова Н.А., Румянцева Н.И. Методы определения редокс-статуса культивируемых клеток растений. Учебно-методическое пособие. Казань: Казанский (Приволжский) Федеральный университет, 2011, 61 с.
12. Кочетов Г.А. Практическое руководство по энзимологии. М.: Высшая школа, 1980, 272 с.
13. Kalb V.F. Jr, Bernlohr R.W. A new spectrophotometric assay for protein in cell extracts. Anal Biochem., 1977, vol. 82, no. 2, pp. 362-371, doi:https://doi.org/10.1016/0003-2697(77)90173-7.
14. Kostir J. Prime stanoveni michaelisovy konstanty. Chemicke Listy, 1985, vol. 79, no. 9, pp. 989-991.
15. Крупянко В.И. Векторный метод представления ферментативных реакций. М.: Наука, 1990, 146 с.
16. Кулинский В.И., Колесниченко Л.С. Система глутатиона I. Синтез, транспорт, глутатионтрансферазы, глутатионпероксидазы. Биомедицинская химия, 2009, т. 55, № 3, с. 255-277.; EDN: https://elibrary.ru/KMSTKZ
17. Коржов В.И., Жадан В.Н. Влияние полиненасыщенных жирных кислот на активность глутатионзависимых ферментов в цитозоле печени и эритроцитах крови крыс в норме и при экспериментальном хроническом бронхите. Украинский биохимический журнал, 2003, т. 75, № 4, с. 115-119.; EDN: https://elibrary.ru/UZJRAN
18. Spolarics Z., Siddiqi M., Siegel J.H., Garcia Z.C., Stein D.S., Ong H., Livingston D.H., Denny T., Deitch E.A. Increased incidence of sepsis and altered monocyte functions in severely injured type A-glucose-6-phosphate dehydrogenase-deficient African American trauma patients. Crit. Care Med., 2001, vol. 29, pp. 728-736, doi:https://doi.org/10.1097/00003246-200104000-00005.
19. Sibgatullina G.V., Haertdinova L.R., Gumerova E.A., Akulov A.N., Kostyukova YU.A., Nikonorova N.A., Rumyanceva N.I. Methods for determining the redox status of cultured plant cells. Educational and methodical manual. Kazan': Kazanskij (Privolzhskij) Federal'nyj universitet, 2011, 61 p. (In Russ.)
