Санкт-Петербург, г. Санкт-Петербург и Ленинградская область, Россия
Санкт-Петербург, г. Санкт-Петербург и Ленинградская область, Россия
с 01.01.2023 по настоящее время
Военно-Медицинская академия им. C.М. Кирова
Санкт-Петербург, г. Санкт-Петербург и Ленинградская область, Россия
Санкт-Петербург, г. Санкт-Петербург и Ленинградская область, Россия
Санкт-Петербург, г. Санкт-Петербург и Ленинградская область, Россия
Статья посвящена исследованию редокс-регуляции трансэпителиального транспорта ионов в осморегулирующих эпителиях. Фармакологический аналог окисленного глутатиона препарат глутоксим® обладает антиоксидантными и радиопротекторными свойствами и широко применяется в качестве иммуномодулятора и цитопротектора в комплексной терапии бактериальных, вирусных и онкологических заболеваний. С использованием метода фиксации потенциала исследовано влияние ингибитора циклооксигеназного пути окисления арахидоновой кислоты - нестероидного противовоспалительного препарата мелоксикама на эффект глутоксима на транспорт Na+ в эпителии кожи лягушки Rana temporaria. Впервые показано, что преинкубация кожи лягушки с мелоксикамом существенно снижает стимулирующее действие глутоксима на транспорт Na+. Полученные данные свидетельствуют об участии циклооксигеназного пути окисления арахидоновой кислоты в действии глутоксима на транспорт Na+ в эпителии кожи лягушки. Полученные результаты способствуют также более детальному пониманию молекулярных механизмов фармакологического действия глутоксима и мелоксикама, и могут быть полезны для применения этих препаратов в клинической практике.
транспорт Na+, глутоксим, мелоксикам, эпителий кожи лягушки
1. Наточин Ю.В. Основы физиологии почки. Л.: Наука, 1982, 184 с.
2. Zhukov O.B., Zubarev A.R., Mezentseva M.V., Andryushkova Yu.A., Ose I.V. Modern aspects of immunomodulating therapy for those sick with recurrent infections of sexual transmission and with antibiotic-resistant bacterial prostatitis. Vracheb. Sosl., 2004, vol. 5/6, pp. 51-56.
3. Krutetskaya Z.I., Lebedev O.E., Melnitskaya A.V., Antonov V.G., Nozdrachev A.D. Effect of disulfide-containing agents on the Na+ transport in the frog skin. Doklady Biological Sciences, 2008, vol. 421, pp. 235-238.
4. Melnitskaya A.V., Krutetskaya Z.I., Lebedev O.E., Antonov V.G., Butov S.N. Involvement of tyrosine and phosphatidylinositol kinases in oxidized glutathione and glutoxim regulation of Na+ transport in frog skin. Cell and Tissue Biology, 2010, vol. 4, no. 3, pp. 273-279.
5. Melnitskaya A.V., Krutetskaya Z.I., Lebedev O.E. The involvement of protein kinase C in the effect of oxidized glutathione and glutoxim on Na+ transport in frog skin. Biochemistry (Moscow), Supplement Series A: Membrane and Cell Biology, 2009, vol. 3, no. 3, pp. 323.
6. Melnitskaya A.V., Krutetskaya Z.I., Lebedev O.E., Butov S.N., Krutetskaya N.I., Antonov V.G. The effect of glutoxim on Na+ transport in frog skin: the role of cytoskeleton. Cell and Tissue Biology, 2012, vol. 6, no. 3, pp. 248-253.
7. Krutetskaya Z.I., Melnitskaya A.V., Antonov V.G., Nozdrachev A.D. The involvement of microtubules in the glutoxim regulation of Na+ transport in the frog skin. Doklady Biological Sciences, 2012, vol. 445, pp. 227-229.
8. Wang B., Wu L., Chen J., Dong L., Chen C., Wen Z., Hu J., Fleming I., Wang D.W. Metabolism pathways of arachidonic acids: mechanisms and potential therapeutic targets. Signal Transduc. Target. Ther., 2021, vol. 26, no. 6(1), p. 94, doi:https://doi.org/10.1038/s41392-020-00443-w.
9. Els W.J., Helman S.H. Dual role of prostaglandins (PGE2) in regulation of channel density and open probability of epithelial Na+ channels in frog skin (R. pipiens). J. Membr. Biol., 1997, vol. 155, no. 1, pp. 75-87, doi:https://doi.org/10.1007/s002329900159.
10. Shakhmatova E.I., Kuznetsova A.A., Prutskova N.P., Bogolepova A.E., Natochin Iu.V. The effect of cyclooxygenase inhibitors on ion and water transport in the human kidney and frog skin and bladder. Ross. Fiziol. Zh. Im. I M. Sechenova, 1997, vol. 83, no. 10, pp. 68-75.
11. Ordway R.W., Singer J.J., Walsh J.V. Jr. Direct regulation of ion channels by fatty acids. Trends Neurosci., 1991, vol. 14, pp. 96-100.
12. Meves H. Arachidonic acid and ion channels: an update. Br. J. Pharmacol., 2008, vol. 155, pp. 14-16.
13. Pavlov T.S., Ilatovskaya D., Levchenko V., Mattson D.L, Roman R.J., Staruschenko A. Effects of cytochrome P-450 metabolites of arachidonic acid on the epithelial sodium channel (ENaC). Am. J. Physiol., 2011, vol, 301, pp. F672-F681.
14. Engelhardt G., Bögel R., Schnitzler Chr., Utzmann R. Meloxicam: Influence on arachidonic acid metabolism. Part I. In vitro findings. Biochem. Pharmacol., 1996, vol. 51, pp. 29-38.
15. Vasilenko K.P., Burova E.B., Antonov V.G., Nikolskii N.N. Oxidized glutathione induces activation of the epidermal growth factor receptor and MAP kinases ERK 1, 2, Tsitologiya, 2006, vol. 48, no. 6, pp. 500-507.
16. Burova E.B., Vasilenko K.P., Antonov V.D., Nikolskii N.N. Transactivation of the epidermal growth factor receptor by oxidized glutathione and its pharmacological analogue glutoxim in A431 cells. Dokl. Biol. Sci., 2005, vol. 404, pp. 392-394.
17. Sejoong Kim M.D., Kwon Wook Joo M.D. Electrolyte and acid-base disturbances associated with non-steroidal anti-inflammatory drugs. Electrolytes Blood Pressure, 2007, vol. 5, no. 2, pp. 116-125.
18. Black H.E. Renal toxicity of non-steroidal anti-inflammatory drugs. Toxicologic pathologic, 1986, vol. 14, no. 1, pp. 83-90.
19. Park J.H., Park Y.S., Lee J.B., Park K.H., Paik M.K., Jeong M., Koh H.C. Meloxicam inhibits fipronil-induced apoptosis via modulation of the oxidative stress and inflammatory response in SH-SY5Y cells. J. Appl. Toxicol., 2016, vol. 36, pp. 10–23.
20. Pawlukianiec C., Gryciuk M.E., Mil K.M., Zendzian-Piotrowska M., Zalewska A., Maciejczyk M.A New insight into meloxicam: Assessment of antioxidant and anti-glycating activity in in vitro studies. Pharmaceuticals (Basel), 2020, vol. 13, no. 9, p. 240.
21. Tasaki Y., Yamamoto J., Omura T., Noda T., Kamiyama N., Yoshida K., Satomi M., Sakaguchi T., Asari M., Ohkubo T., Shimizu K., Matsubara K. Oxicam structure in non-steroidal anti-inflammatory drugs is essential to exhibit Akt-mediated neuroprotection against 1-methyl-4-phenyl pyridinium-induced cytotoxicity. Eur. J. Pharmacol., 2012, vol. 676, pp. 57-63.
