В работе проведено разделение спектра поглощения ацетонового экстракта микроводоросли Tetraselmis viridis методом GPS на спектры отдельных пигментов. Основными пигментами оказались лютеин, неоксантин хлорофилл а и хлорофилл b . В спектре культуры с помощью производной второго порядка выявлены отдельные максимумы поглощения. Полученные данные взяты за основу при составлении модели спектра нативных форм пигментов. Предложены модели нативных форм хлорофилла а , хлорофилла b , и суммарных фотопротекторных каротиноидов. Полученные математические модели спектров поглощения отдельных пигментов и литературные коэффициенты экстинкции могут быть использованы для быстрого расчета концентраций пигментов в культуре.
морские микроводоросли, Tetraselmis viridis, хлорофилл а, хлорофилл b, спектры поглощения, гауссианы
1. Bidigare R.R. et al. In-vivo absorption properties of algal pigments. Ocean Optics X. International Society for Optics and Photonics, 1990, vol. 1302, pp. 290-302.
2. Чурилова Т.Я., Финенко З.З., Акимов А.И. Микроводоросли Черного моря: проблемы сохранения биоразнообразия и биотехнологического использования. Севастополь: ЭКОСИ-Гидрофизика, 2008. @@[Churilova T.Ya., Finenko Z.Z., Akimov A.I. Black Sea microalgae: problems of biodiversity conservation and biotechnological use. Sevastopol: ECOSI-Hydrophysics, 2008. (In Russ.)]
3. Guiry M.D., Guiry G.M. 2019. AlgaeBase. World-wide electronic publication, National University of Ireland, Galway (taxonomic information republished from AlgaeBase with permission of M.D. Guiry). Tetraselmis viridis (Rouchijajnen) R.E.Norris, Hori & Chihara, 1980, URL: http://www.marinespecies.org/aphia.php?p=taxdetails& id=838159 on 2019-12-10.
4. Роухияйнен М.И. Новый вид рода Platymonas (Chlorophyta) из зеленых водорослей. Новости систематики низших растений. М.-Л: Наука, 1966. с. 82-85. @@[Rokhiyaynen M.I. A new species of the genus Platymonas (Chlorophyta) from green algae. News of the taxonomy of lower plants. M.-L: Nauka, 1966, pp. 82-85. (In Russ.)]
5. Тренкеншу Р. П., Терсков И.А., Сидько Ф.Я. Плотные культуры морских микроводорослей. Изв. СО АН СССР (сер. Биол.), 1981, № 15, вып. 3, с. 75-82. @@[Trenkenshu R.P., Terskov I.A., Sidko F.Ya. Dense cultures of marine microalgae. Izv. SB USSR Academy of Sciences (ser. Biol.), 1981, no. 15, iss. 3, pp. 75-82. (In Russ.)]
6. Тренкеншу Р.П. Простейшие модели роста микроводорослей. 1. Периодическая культура. Экология моря, 2005, вып. 67, с. 89-97. @@[Trenkenshu R.P. The simplest models of microalgae growth. 1. Periodic culture // Ecology of the sea, 2005, iss. 67, pp. 89-97. (In Russ.)]
7. Тренкеншу Р.П., Лелеков А.С., Боровков А.Б., Новикова Т.М. Унифицированная установка для лабораторных исследований микроводорослей. Вопросы современной альгологии, 2017, № 1 (13). URL: http://algology.ru/1097 @@[Trenkenshu R.P., Lelekov A.S., Borovkov A.B., Novikova T.M. Unified installation for laboratory research of microalgae. Questions of modern algology, 2017, no. 1 (13). URL: http://algology.ru/1097. (In Russ.)]
8. Боровков А.Б., Геворгиз Р.Г Продуктивность Spirulina platensis и Tetraselmis viridis при использовании различных методов культивирования. Экология моря, 2005, вып. 70, c. 9-13. @@[Borovkov A.B., Gevorgiz R.G. Productivity of Spirulina platensis and Tetraselmis viridis when using various cultivation methods. Ecology of the Sea, 2005, iss. 70, pp. 9-13. (In Russ.)]
9. Владимирова М.Г., Семененко В.Е. Интенсивная культура одноклеточных водорослей. Москва. АН СССР, 1962, 60 с. @@[Vladimirova M.G., Semenenko V.E. Intensive culture of unicellular algae. Moscow. USSR Academy of Sciences, 1962, 60 p. (In Russ.)]
10. Копытов Ю.П. и др. Методика комплексного определения биохимического состава микроводорослей. Альгология, 2015. @@[Kopytov Yu.P. et al. Methodology for the complex determination of the biochemical composition of microalgae. Algology, 2015. (In Russ.)]
11. Wellburn R.W. The spectral determination of chlorophylls a and b, as well as total carotenoids, using various solvents with spectrophotometers of different resolution. Journal of plant physiology, 1994, vol. 144, no. 3, pp. 307-313.
12. Küpper H., Seibert S., Parameswaran A. Fast, sensitive, and inexpensive alternative to analytical pigment HPLC: quantification of chlorophylls and carotenoids in crude extracts by fitting with Gauss peak spectra. Analytical chemistry, 2007, vol. 79, no. 20, pp. 7611-7627.
13. Raes E.J., Isdepsky A, Muylaert K, Borowitzka M.A, Moheimani N.R. Comparison of growth of Tetraselmis in a tubular photobioreactor (Biocoil) and a raceway pond. J. Appl. Phycol., 2014, vol. 26, pp. 247-255, DOI:https://doi.org/10.1007/s10811-013-0077-5.
14. Гуляев Б.А., Литвин Ф.Ф. Первая и вторая производная спектра поглощения хлорофилла и сопровождающих пигментов в клетках высших растений и водорослей при 20оС. Биофизика, 1970, т. 15, № 4, с. 670-680. @@[Gulyaev B.A., Litvin F.F. The first and second derivative of the absorption spectrum of chlorophyll and accompanying pigments in the cells of higher plants and algae at 20°C. Biophysics, 1970, vol. 15, no. 4, pp. 670-680. (In Russ.)]
15. Hoepffner N., Sathyendranath S. Effect of pigment composition on absorption properties of phytoplankton. Mar. Ecol. Prog. Ser., 1991, vol. 73, no. 1, pp. 11-23.
16. Smith E.L. The action of sodium dodecyl sulfate on the chlorophyll-protein compound of the spinach leaf. The Journal of General Physiology, 1941, vol. 24, no. 5, p. 583.
17. Mantoura R. F. C., Wright S. W. Phytoplankton pigments in oceanography: guidelines to modern methods. Oceanographic Literature Review, 1997, vol. 10, no. 44, p. 1110
